ИММУНОГЕНЕТИЧЕСКИЕ ПОКАЗАТЕЛИ У ПАЦИЕНТОВ ПОСЛЕ ЭНДОПРОТЕЗИРОВАНИЯ КРУПНЫХ СУСТАВОВ И ИХ ЗНАЧЕНИЕ В ПРОГНОЗЕ РАЗВИТИЯ ПЕРИПРОТЕЗНОЙ ИНФЕКЦИИ

Цель исследования – определить взаимосвязи иммуногенетических показателей у пациентов после эндопротезирования крупных суставов при первичном остеоартрите и выявить прогностические критерии развития перипротезной инфекции.
Материалы и методы. Обследовано 182 неродственных пациента среднего (45–59) и пожилого (60–74) возраста, с первичным остеоартритом крупных суставов III стадии, которым выполнено тотальное эндопротезирование. 1 группа (n = 92) – пациенты с неосложнённым течением. 2 группа (n = 90) – пациенты с развитием перипротезной инфекции. Контрольная группа – 92 практически здоровых добровольца. Методы исследования: клинические; лабораторные (иммунологический – определение IL-2, IL-4, IL-6, IL-17A, TNFα, IFNγ; генетический – полиморфизм гена IL-2(T330G), IL4(C589T), IL-6(C174G), IL-17A(G197A), TNFα(G308A)); инструментальные (рентгенография). Статистическая обработка результатов исследования проводилась с помощью пакета программ IBM SPSS Statistics Version 25.0 (IBM, США).
Результаты. Нормализованная важность составила для SNP гена IL-2(T330G) – 54,2%, для SNP гена IL-4(C589T) – 100%, для SNP гена IL-6(C174G) – 24,5%, для SNP гена IL-17A(G197A) – 13,7%, и для SNP гена TNFα(G308A) – 59,6%. Точность прогноза прогностической модели составила 97,3%, чувствительность – 96,7%, специфичность – 97,8%, р < 0,001.
Заключение. Взаимодействия иммуногенетических показателей выявили прогностическую ценность определения SNP генов иммунорегуляторных молекул в предсказании перипротезной инфекции у пациентов после эндопротезирования крупных суставов при первичном остеоартрите, без существенного снижения значимости прогноза, как в комплексе (IL-4(C589T) х TNFα(G308A) х IL17A(G197A) х IL-2(T330G) х IL-6(C174G), так и в более упрощённых их взаимодействиях – IL4(C589T) х TNFα(G308A) и IL-4(C589T) х TNFα(G308A) х IL-2(T330G).

1. Клинические рекомендации Министерства здравоохранения Российской Федерации. Коксартроз. URL: https://cr.minzdrav.gov.ru/preview-cr/870_1 (дата обращения: 01.11.2025).

2. Клинические рекомендации Министерства здравоохранения Российской Федерации. Гонартроз. URL: https://cr.minzdrav.gov.ru/preview-cr/868_1 (дата обращения: 01.11.2025).

3. Любимова Л.В., Павлова С.И., Николаев Н.С. и соавт. Возможность использования синовиальных С-реактивного белка, интерлейкина-6 и пресепсина в диагностике перипротезной инфекции. Травматология и ортопедия России. 2024. 30 (4). 5–13. doi: 10.17816/2311-2905-17578.

4. Guder C., Gravius S., Burger C., Wirtz D.C., Schildberg F.A. Osteoimmunology: a current update of the interplay between bone and the immune system. Front. Immunol. 2020. 11 (58). 19. doi: 10.3389/fimmu.2020.00058.

5. Chmielewski M., Pilloni A. Current molecular, cellular and genetic aspects of peri-implantitis disease: a narrative review. Dent J (Basel). 2023. 11 (5). 134. doi: 10.3390/dj11050134.

6. Crawley F.P. Declaration of Helsinki: Full paragraph-by-paragraph comparison indicating changes in version 19 October 2024 compared with the most previous version of 19 October 2013. Zenodo, 2024. URL: https://doi.org/10.5281/zenodo.13997192 (date of access: 01.11.2025).

7. McNally M., Sousa R., Wouthuyzen-Bakker M. et al. The EBJIS definition of periprosthetic joint infection. Bone Joint J. 2021. 103-B (1). 18-25. doi: 10.1302/0301-620X.103B1.BJJ-2020-1381.R1.

8. Мудров В.А. Алгоритмы статистического анализа данных биомедицинских исследований с помощью пакета программ SPSS (доступным языком). Москва: Логосфера. 2022. 143. ISBN 9785986570884.

9. Мироманов А.М., Ешидоржиев Д.А., Миронова О.Б., Мироманова Н.А. Значение SNP гена интерлейкина-4–589C>T и гена фактора некроза опухоли-альфа–308G>A в патогенезе перипротезной инфекции у пациентов после эндопротезирования крупных суставов при первичном остеоартрите. Забайкальский медицинский вестник. 2025. 3. 73–84. doi: 10.52485/19986173_2025_3_73.

10. Мироманов А.М., Гусев К.А., Старосельников А.Н., Мудров В.А. Прогнозирование нарушения консолидации переломов длинных костей конечностей с помощью нейросетевого анализа. Гений ортопедии. 2025. 31 (2). 237–244. doi: 10.18019/1028-4427-2025-31-2-237-244.

11. Vasconcelos D.M., Ribeiro-da-Silva M., Mateus A. et al. Immune response and innervation signatures in aseptic hip implant loosening. J. Transl. Med. 2016. 14 (1). 205. doi: 10.1186/s12967-016-0950-5.

12. Sendi P., Müller A.M., Berbari E. Are all joints equal? Synovial fluid analysis in periprosthetic joint infection. J. Bone Jt. Infect. 2018. 3. 258–9. doi: 10.7150/jbji.30491.

13. Crotti T.N., Dharmapatni A.A., Alias E., Haynes D.R. Osteoimmunology: major and costimulatory pathway expression associated with chronic inflammatory induced bone loss. J. Immunol. Res. 2015. 2015. 281287. doi: 10.1155/2015/281287.

14. Jones D, Glimcher L.H., Aliprantis A.O. Osteoimmunology at the nexus of arthritis, osteoporosis, cancer, and infection. J. Clin. Invest. 2011. 121 (7). 2534–42. doi: 10.1172/JCI46262.

15. Garcia-Moreno M., Jordan P.M., Günther K. et al. Osteocytes serve as a reservoir for intracellular persisting Staphylococcus aureus due to the lack of defense mechanisms. Front. Microbiol. 2022. 13. 937466. doi: 10.3389/fmicb.2022.937466.

16. Brandt S.L., Putnam N.E., Cassat J.E., Serezani C.H. Innate immunity to Staphylococcus aureus: evolving paradigms in soft tissue and invasive infections. J. Immunol. 2018. 200 (12). 3871–3880. doi: 10.4049/jimmunol.1701574.

17. Sridharan R., Cameron A.R., Kelly D.J., Kearney C.J., O’Brien F.J. Biomaterial based modulation of macrophage polarization: a review and suggested design principles. Materials Today. 2015. 18. 313–325. doi: 10.1016/j.mattod.2015.01.019.

18. Zondervan R.L., Vaux J.J., Blackmer M.J., Brazier B.G., Taunt C.J. Improved outcomes in patients with positive metal sensitivity following revision total knee arthroplasty. J. Orthop. Surg. Res. 2019. 14. 182. doi: 10.1186/s13018-019-1228-4.