Изменение концентрации ИЛ-8 в экспериментальной модели литического нетоза
https://doi.org/10.52485/19986173_2021_1_1
Аннотация
Цель исследования. Исследование ассоциации литического нетоза с изменением плазменного уровня ИЛ-8 в эксперименте.
Материалы и методы. Использовали экспериментальные in vitro модели покоящихся и предварительно активированных к литическому нетозу нейтрофилов, взвешенных в 1 мл аутоплазмы. Все образцы инкубировали четыре часа при 37°С, далее центрифугировали для осаждения клеток, плазму отбирали для измерения содержания ИЛ-8 методом проточной цитометрии.
Результаты. В плазме, инкубированной с индуцированными к нетозу клетками, концентрация ИЛ-8 в три раза выше, чем в образцах с покоящимися нейтрофилами.
Заключение. Гибель нейтрофильных гранулоцитов путем литического нетоза ассоциирована с полным высвобождением внутриклеточных запасов ИЛ-8, что сопровождается резким увеличением его концентрации в зоне формирования нейтрофильных внеклеточных ловушек и может способствовать хемотаксису циркулирующих нейтрофильных гранулоцитов и последующей их активации в данном участке с развитием дополнительного протеолитического и свободнорадикального повреждения тканей.
Об авторах
А. А. Паршина
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Читинская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия
Россия
672000, г. Чита, ул. Горького, 39а
Н. Н. Цыбиков
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Читинская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия
Россия
672000, г. Чита, ул. Горького, 39а
Т. М. Караваева
Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования «Читинская государственная медицинская академия» Министерства здравоохранения Российской Федерации
Россия
Россия
672000, г. Чита, ул. Горького, 39а
Список литературы
1. Abrams S., Morton B., Alhamdi Y., Cheng Z., Lane S., Welters I., Wang G., Toh C.-H. A novel assay of neutrophil extracellular trap (NET) formation identifies anti-IL-8 therapies to reduce disseminated intravascular coagulation and mortality in the intensive care unit. Clinical Medicine. 2020. Suppl 2. s114–s115.DOI 10.7861/clinmed.20-2-s114
2. Thiam H.R., Wong S.L., Wagner D.D., Waterman C.M. Cellular Mechanisms of NETosis. Rev. Cell Dev. Biol. 2020. 36. 191–218.DOI 10.1146/annurev-cellbio-020520-111016.
3. Czaikoski P.G., Mota J.M.S.C., Nascimento D.C., Sonego F., Castanheira F.V. e S., Melo P.H., Scortegagna G.T., Silva R.L., Barroso-Sousa R., Souto F.O., Pazin-Filho A., Figueiredo F., Alves- Filho J.C., Cunha F.Q. Neutrophil extracellular traps induce organ damage during experimental and clinical sepsis. PLoS ONE. 2016. 11(2). e148142. DOI 10.1371/journal.pone.0148142.
4. Brinkmann V., Reichard U., Goosmann C., Fauler B., Uhlemann Y., Weiss D.S., Weinrauch Y., Zychlinsky A. Neutrophil extracellular traps kill bacteria Science. 2004. 303(5663).1532–1535. DOI 10.1126/science.1092385.
5. Паршина А.А., Цыбиков Н.Н. Влияние нейтрофильных внеклеточных ловушек на коагуляционный гемостаз и фибринолиз у пациентов со злокачественными новообразованиями толстого кишечника. Забайкальский медицинский вестник. 2019. 4. 90-96.
6. Симбирцев А.С. Цитокины в патогенезе и лечении заболеваний человека. СПб. Фолиант. 2018. ISBN 978-5-93929-283-2.
7. Abrams S.T., Morton B., Alhamdi Y., Alsabani M., Lane S., Welters I.D., Wang G., Toh C.-H. A Novel Assay for Neutrophil Extracellular Trap Formation Independently Predicts Disseminated Intravascular Coagulation and Mortality in Critically Ill Patients. Am J Respir Crit Care Med. 2019. 200 (7). 869–880.DOI 10.1164/rccm.201811-2111OC.
8. Hasler P., Giaglis S., Hahn S. Neutrophil extracellular traps in health and disease. Swiss Med Wkly. 2016. 146. w14352.DOI 10.4414/smw.2016.14352.
9. Jenne C.N., Wong C.H.Y., Zemp F.J., McDonald B., Rahman M.M., Forsyth P.A., McFadden G., Kubes P. Neutrophils recruited to sites of infection protect from virus challenge by releasing neutrophil extracellular trap. Cell Host Microbe. 2013. 13.169–180. DOI 10.1016/j.chom.2013.01.005.
10. Richardson J.J.R., Hendrickse C., Gao-Smith F., Thickett D.R. Neutrophil Extracellular Trap Production in Patients with Colorectal Cancer In Vitro. International Journal of Inflammation. 2017. 2017. 4915062.https://doi.org/10.1155/2017/4915062.
Рецензия
Для цитирования:
Паршина А.А., Цыбиков Н.Н., Караваева Т.М. Изменение концентрации ИЛ-8 в экспериментальной модели литического нетоза. Забайкальский медицинский вестник. 2021;(1):1-4. https://doi.org/10.52485/19986173_2021_1_1
For citation:
Parshina A.A., Tsybikov N.N., Karavaeva T.M. Variations of IL-8 level in experimental model of lytic netosis. Transbaikalian Medical Bulletin. 2021;(1):1-4. (In Russ.) https://doi.org/10.52485/19986173_2021_1_1
Просмотров:
73
Послать статью по эл. почте 